Динамика Т- и В-лимфоцитов у больных ревматоидным артритом, получающих терапию генно-инженерными биологическими препаратами
https://doi.org/10.14412/1996-7012-2022-1-38-45
Аннотация
Цель исследования – оценка динамики субпопуляций Т- и В-лимфоцитов при ревматоидном артрите (РА) на фоне терапии синтетическими базисными противовоспалительными препаратами (сБПВП) и генно-инженерными биологическими препаратами (ГИБП): ингибиторами фактора некроза опухоли α (иФНОα) и ингибитором рецепторов интерлейкина 6 (иИЛ6Р).
Пациенты и методы. В исследование включено 77 пациентов с РА, удовлетворявших критериям ACR/EULAR 2010 г. (средний возраст 56 [44; 62] лет). В 1-ю группу вошли 30 больных (27 женщин и 3 мужчин) с ранним РА, ранее не получавших терапию. 2-ю группу составили 20 пациентов (14 женщин и 6 мужчин), находящихся на терапии сБПВП, которым впервые назначены иФНОα. 3-я группа представлена ретроспективными данными 27 больных (23 женщины и 4 мужчин), ранее применявших сБПВП (МТ – 85%, лефлуномид – ЛЕФ – 15%), которым впервые инициирована терапия иИЛ6Р. У всех участников исследования исходно и через 6 мес проведено иммунофенотипирование Т- и В-лимфоцитов методом проточной цитофлюорометрии по стандартной методике.
Результаты и обсуждение. Во всех группах значимых изменений исследуемого профиля Т-лимфоцитов в течение 6 мес наблюдения не выявлено. При сравнении данных иммунограмм пациентов, получавших сБПВП и иФНОα, значимых различий в субпопуляциях В-лимфоцитов не установлено. Исходно больные группы иИЛ6Р имели более высокие уровни наивных В-лимфоцитов и плазмобластов и низкие концентрации «переключенных» В-клеток. При всех методах лечения количество «переключенных» В-клеток сокращалось, а плазмобластов и плазмоцитов нарастало.
Заключение. Из полученных данных следует, что одновременное снижение уровней В-клеток памяти и их «переключенных» форм, плазмобластов и плазмоцитов можно использовать как маркер для раннего назначения препаратов, нарушающих дифференцировку В-лимфоцитов, в частности иИЛ6Р.
Ключевые слова
Об авторах
А. В. МартыноваРоссия
Александра Владимировна Мартынова
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
Т. В. Попкова
Россия
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
А. П. Алексанкин
Россия
117418, Москва, ул. Цюрупы, 3
Г. И. Гриднева
Россия
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
Е. В. Герасимова
Россия
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
Ю. Н. Горбунова
Россия
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
А. М. Лила
Россия
115522, Москва, Каширское шоссе, 34А
125993, Москва, ул. Баррикадная, 2/1, стр. 1
Литература
1. Насонов ЕЛ. Проблемы иммунопатологии ревматоидного артрита: эволюция болезни. Научно-практическая ревматология. 2017;55(3):277-94.
2. Silverman GJ, Carson DA. Roles of B cells in rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther. 2003;5 Suppl 4(Suppl 4):S1-6. doi: 10.1186/ar1010. Epub 2003 Dec 2.
3. Krishnamurthy A, Joshua V, Haj Hensvold A, et al. Identification of a novel chemokine-dependent molecular mechanism underlying rheumatoid arthritis-associated autoantibodymediated bone loss. Ann Rheum Dis. 2016 Apr;75(4):721-9. doi: 10.1136/annrheumdis-2015-208093.
4. Ford JA, Liu X, Marshall AA, et al. Impact of Cyclic Citrullinated Peptide Antibody Level on Progression to Rheumatoid Arthritis in Clinically Tested Cyclic Citrullinated Peptide Antibody-Positive Patients Without Rheumatoid Arthritis. Arthritis Care Res (Hoboken).2019 Dec;71(12):1583-92.
5. Mellado M, Martinez-Munoz L, Cascio G, et al. T Cell Migration in Rheumatoid Arthritis. Front Immunol. 2015 Jul 27;6:384. doi: 10.3389/fimmu.2015.00384.eCollection 2015.
6. Petrelli A , van Wijk F . CD8(+) T cells in human autoimmune arthritis: the unusual suspects. Nat Rev Rheumatol. 2016 Jul;12(7): 421-8. doi: 10.1038/nrrheum.2016.74. Epub 2016 Jun 3.
7. Kang YM , Zhang X , Wagner UG , et al . CD8 T cells are required for the formation of ectopic germinal centers in rheumatoid synovitis. J Exp Med. 2002 May 20;195(10): 1325-36. doi: 10.1084/jem.20011565.
8. Furst DE, Emery P. Rheumatoid arthritis pathophysiology: update on emerging cytokine and cytokine-associated cell targets. Rheumatology (Oxford). 2014 Sep;53(9): 1560-9. doi: 10.1093/rheumatology/ket414. Epub 2014 Jan 8.
9. Wong P, Quinn J, Sims N, et al. Interleukin-6 modulates production of T lymphocytederived cytokines in antigen-induced arthritis and drives inflammation-induced osteoclastogenesis. Arthritis Rheum. 2006 Jan;54(1): 158-68. doi: 10.1002/art.21537.
10. Yamin R, Berhani O, Peleg H, et al. High percentages and activity of synovial fluid NK cells present in patients with advanced stage active Rheumatoid Arthritis. Sci Rep. 2019 Feb 4;9(1):1351. doi: 10.1038/s41598-018-37448-z.
11. Shegarfi H, Naddafi F, Irshafiey A. Natural Killer Cells and Their Role in Rheumatoid Arthritis: Friend or Foe? Scientific World Journal. 2012;2012:491974. doi: 10.1100/2012/491974. Epub 2012 Apr 1.
12. Ahern DJ, Brennan FM. The role of Natural Killer cells in the pathogenesis of rheumatoid arthritis: Major contributors or essential homeostatic modulators? Immunol Lett. 2011 May;136(2):115-21. doi: 10.1016/j.imlet.2010.11.001. Epub 2010 Nov 10.
13. Qu CH, Hou Y, Bi YF, et al. Values of serum IL-10 and IL-17 in rheumatoid arthritis. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019 Mar; 23(5):1899-1906. doi: 10.26355/eurrev_201903_17227.
14. Jung J, Choe J, Li L, Choi YS. Regulation of CD27 expression in the course of germinal center B cell differentiation: the pivotal role of IL-10. Eur J Immunol. 2000 Aug;30(8):2437-43. doi: 10.1002/1521-4141(2000)30:8< 2437::AID-IMMU2437>3.0.CO;2-M.
15. Li Y, Li Z, Hu F. Double negative (DN) B cells: an under recognized effector memory B cell subset in autoimmunity. Clin Exp Immunol. 2021 Aug;205(2):119-127. doi: 10.1111/cei.13615. Epub 2021 Jun 6.
16. Герасимова EВ, Попкова ТВ, Алексанкин АП и др. Субпопуляции В-лимфоцитов у больных ревматоидным артритом и влияние на них ингибитора рецепторов интерлейкина 6. Научно-практическая ревматология. 2018;56(6):731-8.
17. Cope AP, Schulze-Koops H, Aringer M. The central role of T cells in rheumatoid arthritis. Clin Exp Rheumatol. Sep-Oct 2007;25(5 Suppl 46):S4-11.
18. Scheeren FA, Nagasawa M, Weijer K, et al. T cell-independent development and induction of somatic hypermutation in human IgM+ IgD+ CD27+ B cells. J Exp Med. 2008 Sep 1;205(9):2033-42. doi: 10.1084/jem.20070447. Epub 2008 Aug 11.
19. Weller S, Faili A, Garcia C, et al. CD40- CD40L independent Ig gene hypermutation suggests a second B cell diversification pathway in humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001 Jan 30;98(3):1166-70. doi: 10.1073/pnas.98.3.1166.
20. Sanz I, Wei C, Lee FE, Anolik J. Phenotypic and functional heterogeneity of human memory B cells. SeminImmunol. 2008;20(1): 67-82. doi:10.1016/j.smim.2007.12.006
21. Mahmood Z, Muhammad K, Schmalzing M, et al. CD27-IgD- memory B cells are modulated by in vivo interleukin-6 receptor (IL-6R) blockade in rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther. 2015 Mar 14;17(1):61. doi: 10.1186/s13075-015-0580-y.
22. Lemoine S, Morva A, Youinou P, Jamin C. Human T cells induce their own regulation through activation of B cells. J Autoimmun. 2011 May;36(3-4):228-38. doi: 10.1016/j.jaut.2011.01.005. Epub 2011 Feb 12.
23. Blair PA, Noreсa LY, Flores-Borja F, et al. CD19+CD24hi CD38 hi B cells exhibit regulatory capacity in healthy individuals but are functionally impaired in systemic lupus erythematosus patients. Immunity. 2010 Jan 29; 32(1):129-40. doi: 10.1016/j.immuni.2009.11.009. Epub 2010 Jan 14.
24. Flores-Borja F, Bosma А, Ng D, et al. CD19+CD24hiCD38hi B cells maintain regulatory T cells while limiting TH1 and TH17 differentiation. Sci Transl Med. 2013 Feb 20; 5(173):173ra23. doi: 10.1126/scitranslmed.3005407.
25. Palanichamy A, Barnard J, Zheng B, et al. Novel human transitional B cell populations revealed by B cell depletion therapy. J Immunol. 2009 May 15;182(10):5982-93. doi: 10.4049/jimmunol.0801859.
26. Wang Y, Lloyd KA, Melas I, et al. Rheumatoid arthritis patients display B-cell dysregulation already in the naпve repertoire consistent with defects in B-cell tolerance. Sci Rep. 2019 Dec 27;9(1):19995. doi: 10.1038/s41598-019-56279-0.
27. Meffre E, O'Connor KC. Impaired B-cell tolerance checkpoints promote the development of autoimmune diseases and pathogenic autoantibodies. Immunol Rev. 2019 Nov;292(1): 90-101. doi: 10.1111/imr.12821. Epub 2019 Nov 12.
28. Vital EM, Dass S, Rawstron AC, et al. Management of nonresponse to rituximab in rheumatoid arthritis: predictors and outcome of re-treatment. Arthritis Rheum. 2010 May; 62(5):1273-9. doi: 10.1002/art.27359.
29. Hofmann K, Clauder AK, Manz RА. Targeting B Cells and Plasma Cells in Autoimmune Diseases. Front Immunol. 2018 Apr 23;9:835. doi: 10.3389/fimmu.2018.00835.eCollection 2018.
Рецензия
Для цитирования:
Мартынова АВ, Попкова ТВ, Алексанкин АП, Гриднева ГИ, Герасимова ЕВ, Горбунова ЮН, Лила АМ. Динамика Т- и В-лимфоцитов у больных ревматоидным артритом, получающих терапию генно-инженерными биологическими препаратами. Современная ревматология. 2022;16(1):38-45. https://doi.org/10.14412/1996-7012-2022-1-38-45
For citation:
Martynova AV, Popkova TV, Aleksankin AP, Gridneva GI, Gerasimova EV, Gorbunova YN, Lila AM. Dynamics of T- and B-lymphocytes in patients with rheumatoid arthritis, receiving biological disease-modifying antirheumatic drugs. Sovremennaya Revmatologiya=Modern Rheumatology Journal. 2022;16(1):38-45. (In Russ.) https://doi.org/10.14412/1996-7012-2022-1-38-45